Tolerancia de muestras de heces fecales a diferentes tiempos de refrigeración para la recuperación de larvas infectantes de Haemochus contortus en bioensayos coproparasitológicos con ovinos
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Resumen
La obtención de larvas infectantes viables es sustancial para identificación de género y especie en investigación o diagnóstico parasitológico. El objetivo del estudio fue determinar el tiempo tolerable de conservación de heces frescas para la recuperación de larvas infestantes de tercer estadio (L3) de Haemonchus contortus. A partir de heces de ovino positivas al parásito, se realizaron tres ensayos en diferentes tiempos de refrigeración (5°C): 4d (RFG4d), 21d (RFG21d) y 42d (RFG42d). En cada ensayo al día cero (sin refrigerar) se procesaron muestras y fue el grupo control (CTRL). Se determinó el número de huevos por gramo de heces (HGH), por la técnica de McMaster. Posteriormente se realizó coprocultivo y técnica Baerman. Se identificó el número de L3 de H. contortus por mililitro. La emergencia de larvas (Em), se calculó Em= L3/HGH. El porcentaje de recuperación (P<0.05) de L3 y la EM final fue 19.99, 0.62, 0% y 36.62, 0.46, 0% en RFG4d, RFG21d y RFG42d respectivamente (P<0.05). Se obtuvo mayor porcentaje de emergencia de L3 de H. contortus por coprocultivo con heces sin refrigerar. Si la muestra no se procesara el mismo día puede refrigerarse hasta siete días teniendo emergencia suficiente (16.73%) para identificar el género y especie de la larva.
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Citas
Castañeda RGS, Mathieuc C, Vilarem G, Hoste H, Mendoza de Gives P, González-Peach P, Torres AJ, Sandoval CC. 2017 Age of Haemomchus contortus third stage infective larvae is a factor influencing the in vitro assessment of anthelmintic properties of tannin containing plant extracts. Vet Parasit. 243:130-13. https://doi.org/10.1016j.vetpar.2017.06.019
Chan PJI, Torres AJFJ, Sandoval CAC, Hoste H, Castañeda RGS, Vilarem G, Mathieu C. 2016. In vitro susceptibility of ten Haemonchus contortus isolates from different
geographical origins towards acetone: water extracts of two tannin rich plants. Vet Parasitol. 217:53-60. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2015.11.001
González GR, Mendoza de Gives P, Torres HG. 2013. Variability in the fecal egg count and the parasitic burden of hair sheep after grazing in nematode infected paddocks.
Pesq. Vet Bras. 33(4):469-475.
Kamal B, Taoufik H, Khadija E, Driss B. 2019. A survey of Haemonchus contortus parasite of sheep from Gharb plain, Morocco. Paras Epidem Control. https://doi.org/10.1016/j.parepi.2019.e0009.
Liebano HE, López AME, Mendoza de Gives P, Aguilar ML. 2011. Manual de Diagnóstico para la identificación de larvas de nematodos gastrointestinales en rumiantes. Manual Especial no. 2. pp. 1 - 48. Ciudad de Jiutepec, Morelos, México, Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Parasitología Veterinaria del Instituto Nacional de
Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias ISBN: 978-607-425-694-9
Liebano HE. 2011. Ecología de larvas de los nematodos gastrointestinales de bovinos ovinos y caprinos. Epidemiologia de enfermedades parasitarias en animales domésticos, pp. 254-272. Primera edición ISBN:978-607-00-4015-3.
Mahmoud MAM, Elfadil AAM, Yagoup EA, Adam IA, Mohamed EGS, Bushara SB, Shuaib YA. 2017. Epidemiological study of Haemonchus contortus among sheep in North Kordufan State, Sudan. Inter J of Veter Sci. 64(4): 209-215. P-ISSN: 2304-3075; E-ISSN: 2305-4360
Mehlhorn, H., Düwel, D., Raether, W. (1993). Manual de Parasitología veterinaria (GRASS Ediciones Trad). Hohenheim, Sturrgart, Alemania: Grass-Iatros. 1. ISBN 8477140219, 9799477140214
Mohammed IB, Abdelhamid AME, Fayza AO, Yassir AS. 2016. Prevalence and risk factors of Haemonchus contortus in sheep in Khartoum State, the Sudan. J of Agri and Vet Sci. 9(2):77-83. e-ISSN: 2319-2380, p-ISSN: 2319-2372.
Mushonga B, Habumugisha D, Kandiwa E, Madzingira O. 2018. Prevalence of Haemonchus contortus infections in sheep and goats in Nyagatere District, Rwanda. J of Vet Med. 9 pages. ID 3602081. https://doi.org/10.1155/2018/3602081.
Nabi H, Saeed K, Rahimullah SS, Imran MR, Akbar H, Shehzad W. 2014. Epidemiological study of gastrointestinal nematodes of goats in District Swat, Khyer Pakhtunkhwa.
Pakistan Sci Int (Lahore). 26(1):283-286. ISSN: 1013-5316; CODEN: SINTE 8
Qamar MF, Maqbool A. 2012. Biochemical studies and serodiagnosis of haemonchosis in sheep and goats. J Anim Plant Sci. 22(1): 32-38. ISSN: 1018-7081.
Rodríguez AV, Golderg V, Viotti H, Ciappesoni G. 2015. Early detection of Haemonchus contortus infection in sheep using three different faecael occult blood test. Open Vet Jour. (2): 90-97. ISSN: 2226-448 (Print), ISSN:2218-600 (Online).
Ruffell A, Razaa A, Elliott TP, Kotzea AC. 2018. The use of the larval development assay predicting the in vivo of Levamisole against Haemonchus contortus and Trichostrongylus colubriformis. Veterinary Parasitology. 260:6-11. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2018.07.013
SAS Institute Inc., 2014. User’s Guide: Statistic, Version 9.4th Edition. SAS Inst. Inc., Cary. N.C. USA. SAS Institute Inc. Disponible https://support.sas.com/documentation/cdl/en/procstat/66703/PDF/default/procstat.pdf.
Sonibare AO, Kumse HA, Okewole EA, Talabi AO, Alaka O, Otesile EB, Joshua RA. 2011. Survival and infectivity studies of in vitro cultivated larvae of Haemonchus contortus
in sheep and goats in Nigeria. Vet World. 4(12): 533-536. DOI: 10.5455/vetworld.2011.533-536.
Stankiewiez M, Cabal W, Pernthaner W, Jonas W. 1996. Drug abbreviated infection and infection of develop innunity against Trichostrongylus colubriformis in sheep. Inter J
Parasitol. 26:97-103. https://doi.org/10.1016/0020-7519(95)00088-7
Thrusfield, M. 2018. Veterinary Epidemiology. Wiley-Blackwell Publishing. USA. Fourth Edition. 219-251 p. ISBN: 978-111828027.
